对于新氨基柱，首先应详细阅读使用说明书，了解柱子出厂保存溶剂。一般出厂会保存在正相溶剂中，如果保存溶剂与你将要使用的流动相极性不同不互溶，请先用异丙醇过渡。过渡过程中应注意异丙醇粘度较大，会导致柱压很高，应使用小流速过渡。

　　I）当使用反相模式时，用前请使用异丙醇小流速过夜平衡色谱柱。流速建议0.1-0.2mL/min,之后再转换到99%乙腈冲洗20柱体积，然后转换到和流动相相同比例的不含盐的乙腈水体系冲洗20柱体积。

　　II）当使用正相模式时，如与出厂保存溶剂互溶，可使用流动相直接冲洗20倍柱体积；如不互溶请用异丙醇过渡。

　　如果大家是用于正相的体系：

　　1. 推荐先用正己烷-乙腈（99：1）以0.5ml/min的流速冲10倍柱体积，再根据流动相选用极性相近的氯仿或二氯甲烷以相同的流速冲10倍柱体积，最后换成你实验的流动相

　　2.正相使用时，不宜分析含醛基、羰基的化合物，不可用于还原糖的分析；流动相要脱气，并不得含有羰基化合物和过氧化物（质量不好的、四氢呋喃含有少量）

　　3. 任何时候更换流动相时都要确保新流动相与柱子原保存液可互溶。

　　简单来说，正相条件下使用的氨基柱参照硅胶柱的清洗方法;反相条件下使用的氨基柱参照C18的清洗方法。

　　I）正相使用时，将柱子冲洗干净后，用正己烷-乙腈(99：1)保存（即出厂模式）。

　　II）反相使用时，如短期不用，可用甲醇或乙腈保存；长期不用时需用异丙醇置换然后保存在正相模式下（即出厂模式）